ABSTRACT
La cuantificación de proteínas en orina (PU) es un buen marcador para evaluar la función renal. En presencia de cadenas livianas libres monoclonales de inmunoglobulinas en orina (CLLM), o proteína de Bence Jones, el valor de PU provee un índice de la masa tumoral, de fundamental importancia en el monitoreo de pacientes con síndromes linfoproliferativos tales como mieloma múltiple micromolecular, enfermedad por depósito de cadenas livianas, y amiloidosis (AL). La determinación de PU por el método de unión al colorante Rojo de Pirogalol-Molibdato (RPM) es cada vez más utilizada porque es simple de realizar y fácilmente automatizable. El objetivo de éste trabajo es evaluar el comportamiento del método de RPM en la determinación de proteínas totales en muestras de orina compuestas por CLLM exclusivamente y estimar su correlación con otras metodologías de uso habitual. Se seleccionaron 79 muestras de orina de 24 h de recolección que presentaron solamente CLLM por electroinmunofijación (EIF) y por electroforesis en geles de poliacrilamida (SDS-PAGE). Se utilizó la técnica de Bradford con Azul Brillante de Coomasie (ABC), como otro método de unión a colorantes, y el método de Exton con ácido sulfosalicílico al 3 por ciento (ASS), de uso tradicional en éste medio. Para el método de RPM se utilizó un equipo comercial (RANDOX, Urinary Proteins) en un autoanalizador Selectra 2 Vitalab (Wiener). La cuantificación de cadenas livianas kappa y lambda se efectuó por inmunonefelometría (IN) (ARRAY 360 Beckman). El método de RPM tuvo una correlación estadísticamente significativa con el de ABC (r=0,888; ABC = 2,16 x RPM -0,09) y con IN (r= 0,790; IN = 11,9 x RPM + 0,16). El método de ASS correlacionó significativamente con el de ABC (r=0,324; p0,01) y con el de RPM (r=0,556; p<0,01), pero muy débilmente, por lo que no es posible vincularlos entre sí bajo aceptables intervalos de predicción. Se concluye que para la medición de las CLLM en los casos de orinas con concentraciones superiores al límite de linealidad del método de RPM, la mejor opción para evitar reacciones erráticas, es realizar una dilución 1/10 de la muestra